链霉亲和素（Streptavidin，SA）为Streptomyces Avicllrdi菌培养过程中的分泌产物。是大小为66KDa的四聚体蛋白，一分子链霉亲和素可以高度特异性地与四分子生物素结合，链霉亲和素-生物素复合物的解离常数处于10^-14 mol/L数量级，是已知自然界中的非共价相互作用之一。其特别的结构特性使其广泛应用于免疫学中ELISA检测信号的放大。SA亦可用于免疫微孔板、免疫层析硝酸纤维素膜、基因芯片，快速固定生物素化的抗原、抗体、核酸等物质，偶联NHS磁珠、树脂微球，广泛应用于发光诊断、生物素化物质分离、磁性试纸条免疫层析等方面。

产品信息

产品特点 

1

使用SA包被板进行的测定扩展了定量范围，从而降低了稀释需求，使其具有更宽的动态范围；

2

标准曲线在检测小生物素化分子（例如多肽和寡核苷酸）方面表现出更大的线性，使得测定精度更高；

3

孔板预先包被并封闭，可减少测定步骤、节省时间，同时提高了铺板均一性，避免实验误差；

4

包被板以8孔联排形式提供，可减少浪费。

同类产品对比

01

测定包被板结合活性

1. 用200μL洗涤缓冲液冲洗预包被酶标板，每孔三次；

2. 准备1mg/mL的Bio-HRP溶液，用1:2000的稀释度对第一孔进行1:2连续倍比稀释，在室温下孵育1小时；

3. 用200μL洗涤缓冲液清洗每孔4次；

4. 用100μL底物溶液室温孵育15分钟；

5. 加50μL终止液，测量每个孔的吸光度。

结果显示：本公司所产SA包被板结合活性与X品牌及Y品牌平行，甚至更优。

02

双抗夹心法检测

1. 用200μL的Wash Buffer洗涤预包被酶标板，每孔三次。在每孔中加入100μL生物素化捕获抗体，在室温振荡孵育60分钟；

2. 用200μL的Wash Buffer洗涤每孔四次，连续稀释抗原，64ng/mL作为高点，同时设置0孔，每孔加100μL。在室温振荡孵育60分钟；

3. 用200μL的Wash Buffer洗涤每孔四次。在每个孔中加入100μL一抗，室温振荡孵育60分钟；

4. 用200μL的Wash Buffer洗涤每孔四次。每孔加入100μL酶标二抗。在室温振荡孵育30分钟；

5. 用200μL的Wash Buffer洗涤每孔四次。每孔加入100μL底物溶液室温孵育20分钟；

6. 加50μL终止液，测量每个孔的吸光度。

结果表明：本包被板显色更高，拟合曲线优于X品牌及Y品牌。

03

稳定性检测

将包被好的SA板条放于37℃进行加速稳定性实验，放置16天（约4℃放置24个月），随后取出进行结合活性检测。

结果显示：考核16天后，结合活性OD值变化不大且梯度良好，表明包被板稳定性良好。

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