莽草酸脱氢酶(SD)活性检测试剂盒 微量法
- 发布日期: 2019-05-24
- 更新日期: 2025-07-04
产品详请
产地 |
北京
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品牌 |
Solarbio
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货号 |
BC4185
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保存条件 |
2-8℃保存
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英文名称 |
Valeric acid dehydrogenase (SD) activity detection kit
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CAS编号 |
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保质期 |
1年
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莽草酸脱氢酶(SD)活性检测试剂盒说明书
微量法
注意:正式测定之前选择 2-3 个预期差异大的样本做预测定。
英文名称:Valeric acid dehydrogenase (SD) activity detection kit
关键词:莽草酸脱氢酶|莽草酸脱氢酶活性检测|SD|SD活性检测|SD活性测定
货号:BC4185
规格:100T/96S
产品内容:
提取液:液体 100mL×1 瓶,4℃保存,用前摇匀。
试剂一:液体 10mL×1 瓶,4℃保存。
试剂二:粉剂×1 瓶,4℃避光保存。临用前加入 5mL 蒸馏水溶解。
试剂三:粉剂×1 瓶,4℃避光保存。临用前每瓶加入 10mL 蒸馏水溶解。
产品说明:
莽草酸途径是存在于植物和微生物中的一条重要的代谢途径,莽草酸脱氢酶(EC 1.1.1.25) 是莽草酸合成代谢途径中催化第四步反应的关键酶。
莽草酸脱氢酶催化莽草酸和 NADP 产生 NADPH,检测 340nm 下的吸光值增加速率来表示 SD 活性。
试验中所需的仪器和试剂:
紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、微量石英比色皿/96 孔 UV 板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、粗酶液提取:
组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL提取液(加入前摇匀))进行冰浴匀浆,然后,8000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。
细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1mL 提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔 7 秒,总时间 3min);然后 8000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。
液体:直接检测。
二、测定步骤:
1、 分光光度计/酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。
2、 工作液的配制:按照试剂一:试剂二:试剂三为 7:4:8 的体积比例充分混匀,备用,用前 25℃预热 15min。
3、 操作表:在微量石英比色皿/96 孔 UV 板中分别加入下列试剂:
试剂名称 空白管 测定管
工作液(μL) 190 190
样本(μL) 10
蒸馏水(μL) 10
加入样本即开始计时,充分混匀后于 340nm 处测定 20s 时的吸光值 A1 和 5min20s 时的吸光值A2,计算△A 测定管= A2 测定-A1 测定,△A 空白管=A2 空白-A1 空白,△A=△A 测定管-△A 空白管。
空白管只需做一次。计算△A= A2-A1。空白管只需做一次。
三、SD 酶活计算:
1、 按微量石英比色皿计算:
(1)按蛋白浓度计算
酶活定义:每毫克蛋白每分钟产生 1 nmol 的 NADPH 定义为一个酶活力单位。
SD 酶活(U/mg prot)= A÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×Crp)÷T= 643×△A÷Cpr
(2)按样本质量计算
酶活定义:每克样品每分钟产生 1 nmol 的 NADPH 定义为一个酶活力单位。
SD 酶活(U/g 鲜重)= A÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×W÷V 样总)÷T
=643×△A÷W
(3)按照细胞数量计算
酶活定义:每 104个细胞每分钟产生 1 nmol 的 NADPH 定义为一个酶活力单位。
SD 酶活(U/104cell)= A÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样÷V 样总×细胞数量(万个))÷T= 643×△A÷细胞数量(万个)
(4)按液体体积计算
酶活定义:每 mL 样每分钟产生 1 nmol 的 NADPH 定义为一个酶活力单位。
SD 酶活(nmol/min/mL)= A÷(ε×d)×109×V 反总÷V 样÷T= 643×△A
ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/ mol /cm;
d:比色皿光径,1cm;
V 反总:反应体系总体积,2×10-4L;
V 样:反应体系中样本体积,0.01mL;
Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;
W:样本质量,g,
T:反应时间:5min。
2、 按 96 孔 UV 板计算:
将上述公式中的 d-1cm 改为 d-0.6cm(比色皿光径)进行计算即可。
注意事项:
1、 样本提取上清液置于冰上待测,且样本提取完成后建议 2h 内测完。
2、 样品的蛋白浓度需自行测定,由于提取液中含有较高的蛋白浓度(约 10mg/mL),所以测定样品
蛋白浓度时需扣除提取液自身蛋白浓度。
3、 △A 大于 1 时,建议将样品稀释后再进行测定。当△A 小于 0.01 时,可以延长反应时间(10min
或 15min)来测定。
4、 空白管为检测各试剂组分质量的检测孔,正常情况下,变化不超过 0.01。